組織サンプルのブロックの体積に関する生物学的顕微鏡検査
これまでのところ、凍結フィックス化、凍結したウルトラ薄切片、および凍結乾燥は、組織および細胞のX線顕微鏡の日常的な方法です。この方法に関する以下の詳細を提供してください。
スポットライトを備えた生物学的顕微鏡は、スポットライトを上下に動かして中程度の輝度を実現できます。また、可変開口の開口部も変更して中程度の輝度を実現することができます。光が太陽からの場合、スポットライトを適切に上げることができ、可変光の開口部を適切に拡大することができます。光が強すぎると、スポットライトを適切に下げることができ、交差点の開口部を適切に減らすことができます。この状況でまだ眩しいと感じている場合は、スポットライトの下にあるブラケットに適切なフィルターを配置することを選択できます。このオークはあなたを満足させる明るさを達成できます。もちろん、スポットライトの上部と下位の位置を調整すると、ライトリーディングの開口サイズが変更され、適切なフィルターを選択すると、一定の練習と経験が必要です。
生物学的顕微鏡検査における非常に重要な問題は、細胞のサンプリングと分離のプロセスです。凍結乾燥および樹脂埋め込み（FD）後、凍結したウルトラシンセクションを慎重に処理して、観察と分析中に各部分の65要素含有量が損傷しないようにする必要があります。 X線微量分析に伴う多数のステップと高いコストにより、長期にわたる多段階処理後に分析された細胞が損傷または死亡した場合、誤った結論を引き出すことは残念です。ゼラチナーゼ処理によって分離された心筋細胞には2つの形があり、1つは長い棒状で、もう1つは円形です。後者は、細胞分離の過程で損傷した死にかけている細胞を指します。
これら2つのタイプの細胞における電解質の含有量と分布は、生物学的顕微鏡では非常に異なります。 NAは非常に高く、kは循環心筋細胞で非常に低く、線形樹状突起のCaの濃度は非常に高くなっています。他の分析方法で検証した後、円形細胞の高NAおよび低kとミトコンドリアの高CAが細胞分離中の膜損傷の結果であることが証明されています。細胞と組織の冷たい固定法は、多くの場合、最初に消光し、液体窒素に保存することが含まれます。保存効果には、消光固定が重要です。生細胞または新鮮な組織には水が豊富で、消光すると、冷媒と直接接触する細胞または組織の部分（特に冷却に液体窒素を使用する場合）が最初に凍結して固定され、細胞の中央部分が粉砕されて固定されないようにする「シェル」を形成します。したがって、X線微量分析を行うと、より大きな細胞の中央部分に氷の結晶が存在することがよくあります。この状況が発生するのを防ぐために、融点が液体窒素よりも高いが806C低い融点を持つ物質が冷媒として使用されます。これらの物質の多くはありますが、それらは簡単に入手でき、最も手頃な価格は濃縮されたプロパンです（沸点42.120C、融点187.10C、分子量44.1）。しかし、その欠点は、それが可燃性であることです。
