倒立光学顕微鏡と組み合わせたAFM

倒立光学顕微鏡と組み合わせたAFM

倒立光学顕微鏡と AFM を組み合わせたイメージングは​​、光学データ (位相コントラストや蛍光データなど) を、AFM のみが提供できる高解像度トポグラフィーおよび機械データと相関付けるユニークな機会を提供します。

FlexAFM のオープン光路設計のおかげで、光は障害物を最小限に抑えながら FlexAFM を通過できます。さらに、カンチレバー ホルダー SA の特別な SureAlign™ 光学設計により、液体環境での FlexAFM 操作が簡素化され、レーザー アライメントの必要がなくなりました。倒立光学顕微鏡オプションと統合すると、FlexAFM は生理学的条件下で細胞をイメージングして特性評価するための理想的なシステムになります。この例では、生きた Rat-2 線維芽細胞が画像化されました。

倒立光学顕微鏡法と組み合わせた FlexAFM の応用は、決して生命科学に限定されるものではありません。以下に示すのは、光学顕微鏡と原子間力顕微鏡を使用した、コーティングされたガラスサンプルの分析です。 AFM は、画像化された領域全体にわたって高解像度のデータを提供し、光学顕微鏡で観察される構造の性質を明らかにします。膜厚測定にも使用できます。

ペトリ皿内の細胞の画像: (左) FlexAFM ユニットと倒立光学顕微鏡オプションを使用して取得した倒立光学顕微鏡からの位相コントラスト画像。細胞培養培地中の生きた Rat-2 線維芽細胞と AFM カンチレバーを示しています。 (右) 同じセットアップで捕捉された細胞の AFM 画像。Rat-2 細胞骨格の詳細が表示されており、細胞膜を通して容易に区別できます。 AFM画像サイズ：70μm×60μm。

コーティングされたガラスの位相コントラスト画像 (上) と AFM 画像 (下)。光学顕微鏡下で観察されるテクスチャー特徴（例えば、楕円領域の内部）に対応するコーティング内の細孔構造は、AFM測定によって確認されます。これらは、コーティングの厚さを決定する信頼性の高い方法を提供します。この例では、厚さは 40 nm です。 AFM画像サイズ：90μm×35μm。