フィルムの光学顕微鏡および電子顕微鏡検査用のサンプルの作製方法
マイクロフィルム化の方法には、一般的に、切片化法、全面封印法、コーティング法、プレス法の 4 つの種類があります。
①スライス法。光学顕微鏡のスライス厚は2～25ミクロンですが、一般的な植物や動物の材料では、約10ミクロンの厚さのスライスが適切です。切片法は、包埋剤によって異なります。一般的に使用されているのは、パラフィン切片法、綿糊切片法、凍結切片法、グリコールメタクリレート法（GMA法と呼ばれる）です。パラフィン切片法には、固定、包埋、切片化、染色、脱水、密封の手順が含まれます。重要なのは、バイオマテリアルをパラフィンワックスに包埋し、パラフィンワックスをサポートとして使用して、ワックスブロックに浸したバイオマテリアルを理想的な薄いスライスに切断することです。 操作プロセスは次のとおりです。固定→水洗→低濃度から高濃度のアルコールで段階的に脱水→キシレンで透明化→ワックス浸漬→包埋→切断→パッチング→キシレンで脱ワックス→高濃度から低濃度のアルコール処理で段階的に処理し、最後に水に移行→染色→低濃度から高濃度のアルコールで段階的に脱水→キシレンで透明化→樹脂接着剤で密封。基本的な手順は、あらゆる種類のフィルム製造技術で同じです。
② 一体封入法。フィルム全体封入法の単一細胞、微小生物、または分散した器官に使用されます。この方法も、固定、染色、脱水、透明化、封入のさまざまな手順が必要です。この方法は、クサカゲロウや昆虫の口器の準備に使用されます。
塗抹法。容易に分散する生物学的標本をスライド上に塗布する調製法。血液塗抹標本がその一例です。
④プレス法。動物の精母細胞、根端細胞など、自然で分散しやすい組織、または処理後に分散しやすい組織をスライドガラスに置き、カバーガラスをかぶせ、組織を強制的に押しつぶして、細胞または細胞内構造が層状に広がるようにする撮影法。プレス法は染色体の観察によく使用され、通常はマゼンタアセテート、リケンレッド、石炭酸レッドで染色します。
