顕微鏡スライドの作製方法
1.スミア法
スメアリング法とは、スライドガラス上に材料を均一に塗布して作製する方法です。
塗抹標本には、単細胞生物、小さな藻類、血液、細菌培養培地、動植物の緩い組織、精巣、葯などが含まれます。{0}
スミアリングを行う場合は、次の点に注意する必要があります。
(1) スライドガラスは洗浄する必要があります。
(2) スライドガラスは平らである必要があります。
(3) 塗装は均一でなければなりません。液滴をスライドガラスの中央右に塗布し、解剖刃またはつまようじで均一に広げます。
(4) 塗膜は薄くすること。もう一枚のスライドガラスをスライドとして使用し、液を塗布したスライドガラスの表面に沿って右から左へ軽く押し（スライドガラス間の角度は30度～45度）、均一に薄く塗布します。
(5) 修正されました。固定が必要な場合は、化学固定剤または乾燥方法 (細菌) を使用して固定できます。
(6) 染色。細菌はメチレンブルーを使用し、血液はライト染色液を使用します。染色液はコーティング表面全体を覆う必要があります。
(7)洗い流します。吸収または乾燥するには、吸収性の高い紙を使用してください。
(8)フィルムをシールします。カナダ産樹木フィルムを使用した長期保存。
2. 打錠方法
圧縮法は、生体材料をスライドガラスとカバーの間に置き、一定の圧力を加えて組織細胞を分散させてスライスする方法です。
打錠法の一般的なプロセス:
(1) 材料の選択。細胞分裂を観察するには、細胞分裂の活発な新鮮な組織細胞を材料として選択する必要があります。根端、茎端分裂組織、骨髄細胞、葯（花粉母細胞）など。精子の巣（精母細胞）など
(2) 修正されました。材料の固定は必要に応じて決定でき、サンプルはすぐに圧縮されて観察されます。別途固定処理（染色と同時）を行う必要はありません。サンプリング直後に材料を検査しない場合は、固定剤 (通常は酢酸アルコール固定剤) で固定することができます。 2 ～ 24 時間固定した後 (材質に応じて)、95% エタノールですすぎ、後で使用するために 70% エタノールに保存します。
(3) 分離。細胞によって容易に分散されない材料は、加水分解分離溶液 (1N HCl または塩酸精液など) で 6 ～ 20 分間処理する必要があります。解離後、染色する前に水で洗い流す必要があります。
(4) 染色。染料にはたくさんの種類があります。染色体は通常、酢酸マゼンタ染色液で染色されます。
(5) タブレットを押します。材料をスライドガラス上に置き、水または色素溶液を一滴加え、スライドをカバーで覆い、親指で軽く押します。
(6) 観察してください。圧縮後は顕微鏡で観察できます。
