生物顕微鏡を使用した組織ブロック体積の測定
これまでのところ、凍結固定、凍結超薄切片作成、凍結乾燥-、凍結乾燥-が、組織および細胞の X 線顕微鏡検査で日常的に使用されています。-この方法に関する次の詳細を提供してください。
スポットライトを備えた生物顕微鏡は、スポットライトを上下に移動させて適度な明るさを実現することができ、また、可変絞りの絞りを変更して適度な明るさを実現することもできる。太陽からの光であれば、スポットライトを適切に持ち上げることができ、可変光の口径を適切に拡大することができる。光が強すぎる場合は、スポットライトを適切に下げ、交差点の絞りを適切に下げることができます。この状況でもまぶしく感じる場合は、スポットライトの下のブラケットに適切なフィルターを配置することを選択できます。このオークなら満足のいく明るさを実現できます。もちろん、スポットライトの上下の位置を調整することで、光の読み取り値の開口サイズを変更したり、適切なフィルターを選択したりすることができますが、それにはある程度の練習と経験が必要です。
生物顕微鏡検査における非常に重要な問題は、細胞をサンプリングして単離するプロセスです。凍結乾燥と樹脂包埋（FD）の後、観察や分析中に各部品の 65 元素含有量が損傷しないように、凍結超薄切片を慎重に処理する必要があります。- X線微量分析には多くの手順と高額な費用がかかるため、長時間にわたる多段階の処理の後に分析された細胞が損傷したり死滅したりすると、残念ながら誤った結論を導き出すことになります。-ゼラチナーゼ処理によって分離された心筋細胞には 2 つの形状があり、1 つは長い棒状で、もう 1 つは円形です。{8}}後者は、細胞分離の過程で損傷を受け、死につつある細胞を指します。
これら 2 種類の細胞内の電解質の含有量と分布は、生物顕微鏡で見ると大きく異なります。円形心筋細胞ではNaが非常に高く、Kが非常に低く、線状樹状突起ではCaの濃度が非常に高くなります。他の分析方法で検証した結果、円形細胞の高 Na および低 K、およびミトコンドリアの高 Ca は、細胞分離時の膜損傷の結果であることが証明されました。細胞や組織の低温固定法では、多くの場合、最初に細胞や組織を急冷し、次に液体窒素中で保存します。保存効果には急冷固定が重要です。生きた細胞や新鮮な組織には水分が豊富に含まれており、急冷すると、冷媒と直接接触する細胞や組織の部分（特に冷却に液体窒素を使用する場合）が多くの場合最初に凍結して固定され、細胞の中心部分が押しつぶされて固定されるのを妨げる「殻」を形成します。したがって、X-線微量分析を行うと、大きな細胞の中心部に氷の結晶が存在することがよくわかります。これを防ぐために、液体窒素より融点が高く、融点が806度低い物質が冷媒として使用されます。これらの物質は多数ありますが、入手が容易で、最も手頃な価格は濃縮プロパン (沸点 42.120℃、融点 187.10℃、分子量 44.1) で、冷却速度も速いです。しかし、可燃性であるという欠点があります。
